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枝肉拭き取り検査方法
1.検体の採取
洗浄後の枝肉を予冷室において、100p2の滅菌拭き取り枠を用い滅菌綿棒(生理食塩水10ml入り)により、1頭につき閘門周囲と脇下の2ヶ所を上下左右各10回拭き取り(綿棒は1部位1個)検体とします。
2.資料原液の調整
採取した2部位分の滅菌綿棒及び生理食塩水を2分間ストマッカ―にて混合し、資料原液とします。
3.測定方法

(1) 細菌数(生菌数)
@1平板に30〜300個のコロニーが得られるよう試料原液を段階希釈します。試料原液を1mlを滅菌生理食塩水9mlに混合し10倍希釈液とし、同様に順次希釈し4段階程度調整します.

A試料原液及び各段階に希釈した試料溶液を1試料溶液につき2枚の滅菌シャーレに各1mlずつ分注します。

B50℃に保温した標準寒天培地を約15ml.分注し混釈します。

C定温にて冷却凝固後、35℃±1.0℃ので艀卵器にて48±2時間倒置培養します。

D数算定基準にもとづきコロニー数を計測し、」希釈倍率を乗じ1p2あたりの生菌数を算出します。

(2)大腸菌(E.coli)及び大腸菌群

@試料原液及び各段階に希釈した試料溶液を1試料溶液につき2枚の滅菌シャーレに各1mlずつ分注します。

A50℃に保温したクロモカルト・コリフォーム寒天培地を約15ml分注し混釈します。

B定温にて冷却凝固後、35℃±1.0℃の艀卵器にて18〜24時間倒置培養します。

C農青色又は紫色コロニーを、大腸菌、赤色コロニーを大腸菌群と判定し、生菌数算定基準に基づきコロニー数を計測し、希釈倍率を乗じ、1cm2あたりの大腸菌数及び大腸菌群数を算定します。

D濃青色又は紫色コロニーが未検出の場合は”大腸菌陰性”、”赤色コロニーが未検出の場合は"大腸菌群陰性"と判定します。

(3)黄色ブドウ球菌

@試料原液及び各段階に希釈した試料溶液を1試料溶液につき2枚の卵黄加マンニット食塩培地に各0.1mlずつ分注し塗沫します。

A35℃±1.0℃の艀卵器にて48±3時間倒置培養します。

B卵黄反応陽性の定型的コロニーが検出された場合は、普通寒天斜面培地に塗沫し、35℃±1℃の艀卵器にて18〜24時間培養し確認検査を行います。

C確認検査は、グラム染色、コアクラ―ぜ試験、VP反応を行います。

D確認検査の結果、”グラム陽性球菌””コアクラ―ぜ試験陽性””VP反応陽性”を示したものを”黄色ブドウ球菌陽性”と判定し、必要に応じて菌数を算出します。

(4) サルモネラ

@試料原料にEEMブイヨンを10倍料加え、ストマッカ―にて2分間混合し、35℃±1.0℃の艀卵器にて18〜4時間培養します。

AEEMブイヨン培養液2mlをSBG培地15mlを加え43℃±1℃艀卵器にて18〜24時間培養します。

BSBG培地培養液から1白金耳をDHL寒天培地に塗沫し、35℃±1℃の艀卵器にて18〜24時間培養します。

C硫化水素産生の定型的コロニーが検出された場合は、グラム染色及びTSI寒天培地、LIM寒天培地、SC培地にて確認試験を行います。

D確認試験の結果、”グラム陰性無芽胞桿菌”及び生化学的性状でサルモネラの性状を示したものを”サルモネラ陽性”と判定します.また必要に応じてサルモネラ用診断用抗血清にて型別を行います。

(5)腸管出血性大腸菌O157

@試料原液にノポピオシン加mEC培地を10倍量加え、ストマッカ―にて2分間混合し、42℃±1℃の艀卵器にて18〜24時間培養します。

Aノポピオシン加mEC培地培養液から1白金耳をCT/SMAC寒天培地に塗沫し、35℃±1℃の艀卵器にて18〜24時間培養します。

Bソルビトール非分解のコロニーが検出された場合は、グラム染色及びCLIG寒天培地、TSI寒天培地、LIM培地にて確認試験を行います。

C確認試験の結果、”グラム陰性無芽胞桿菌”及び生化学的性状で大腸菌の性状を示したものを病原大腸菌用血清にて血清型別を行います。

D病原大腸菌診断用抗血清にてO157と確認されたものを”腸管出血性大腸菌O157陽性”と判定し、更にRPLA法にてVero毒素産生を確認します。

※資料提供、拭き取り検査委託先: (財)宮城県公衆衛生協会
保険衛生部・保健衛生課 TEL 022-771-4722

   
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FAX 0220-55-4129